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細菌的分離培養是兔場實驗室診斷中非常重要的壹步。通過細菌的分離和純培養,可以根據菌落的形態、大小、結構、顏色、氣味、溶血等進行初步鑒定,然後通過進壹步的染色鏡檢或特殊培養進行鑒定或研究,為病原體的診斷提供依據。

1.培養基制劑是細菌學檢驗過程中非常重要的材料,它含有細菌生長所必需的營養物質。只有在培養基中培養細菌後,才能對其進行準確檢查

兔場實驗室細菌培養技術(兔場真菌感染怎麽辦)

細菌的分離培養是兔場實驗室診斷中非常重要的壹步。通過細菌的分離和純培養,可以根據菌落的形態、大小、結構、顏色、氣味、溶血等進行初步鑒定,然後通過進壹步的染色鏡檢或特殊培養進行鑒定或研究,為病原體的診斷提供依據。

1.培養基制劑是細菌學檢驗過程中非常重要的材料,它含有細菌生長所必需的營養物質。只有在培養基中培養細菌後,才能對其進行準確檢查

兔場實驗室細菌培養技術(兔場真菌感染怎麽辦)

細菌的分離培養是兔場實驗室診斷中非常重要的壹步。通過細菌的分離和純培養,可以根據菌落的形態、大小、結構、顏色、氣味、溶血等進行初步鑒定,然後通過進壹步的染色鏡檢或特殊培養進行鑒定或研究,為病原體的診斷提供依據。

1.培養基制劑是細菌學檢驗過程中非常重要的材料,它含有細菌生長所必需的營養物質。只有在培養基中培養細菌後,才能對其進行準確檢查並獲得可靠的結果。

(1)肉水的制備:

①材料:500克瘦牛肉,1000毫升蒸餾水(或普通水)。

②方法:將瘦牛肉去脂去筋,切塊或絞碎,按1kg牛肉加2000ml水的比例加水浸泡壹夜,煮沸壹小時,用紗布初步過濾肉渣,擠出肉水,再用濾紙過濾,補足原水,放入燒瓶中,用120℃高壓滅菌器滅菌20分鐘,制成肉水。

另壹種制作肉水的方法是:取牛肉膏0.5-1.0g,加入蒸餾水100ml,加熱溶解,用濾紙過濾,滅菌同上。

③用途:制作各種培養基的基礎。

(2)營養肉湯:

①材料:肉水1000ml,蛋白腖10g,氯化鈉5g。

②方法:肉水中加入蛋白腖和氯化鈉,微加熱溶解,用氫氧化鈉溶液調節pH值至7.4-7.6,再加熱使溶液均勻。過濾,分裝,高壓滅菌備用。

③用途:可用於壹般細菌生長需要,檢查細菌生長性能,也可作為制作固體培養基的依據。

(3)營養瓊脂:

①材料:營養瓊脂粉40g,蒸餾水1000ml。

②方法:將營養瓊脂粉加入蒸餾水中,攪拌浸泡65,438±0小時,加熱至完全溶解,高壓滅菌備用。

③用途:分離細菌的純培養及作為其他特殊培養基的基礎。

(4)血瓊脂培養基:

①材料:去纖維蛋白血5-10 ml,營養瓊脂100 ml。

方法:準備壹個裝有玻璃珠的無菌三角瓶,無菌采血,註入三角瓶中,不斷搖動直至血液纖維分離,壹般需要10分鐘。

高壓滅菌營養瓊脂融化後,待其冷卻至55-60℃時,加入去纖維蛋白血液。註意無菌操作。加入血液後,輕輕搖勻以避免產生氣泡,立即將其倒入無菌盤中或分裝在無菌試管中備用。

③用途:觀察細菌溶血情況。有些細菌需要這種培養基進行第壹次分離。

(5)厭氧肝切片肉湯:

①材料:營養肉湯、動物肝塊或肉渣、液體石蠟。

②方法:用少量肉末、肉渣或動物肝臟作為肉湯,分裝於試管中,加入5 ml營養肉湯,上層加入0.5-1.0 ml液體石蠟,120℃滅菌20分鐘。

③用途:厭氧菌的培養。

(6)麥康凱瓊脂:

①材料:麥康凱瓊脂粉38g,蒸餾水1000ml。

②方法:將麥康凱瓊脂粉加入蒸餾水中,攪拌浸泡1h,加熱至完全溶解,高壓滅菌備用。

③用途:常用於大腸桿菌的分離培養。

2.細菌接種法

(1)平板劃線接種法:平板劃線接種法是細菌分離培養中最常用的方法,可使細菌分散生長,形成單菌落。左手握住培養皿,拇指、食指、中指以不超過20度的角度揭開。右手握住接種環,接種環與瓊脂表面成45度左右的角度。在培養基邊緣塗抹少許病料,對接種環進行火焰滅菌,冷卻後觸摸培養基邊緣的病料區域,向壹側畫壹條水平線,這樣就可以連續畫出壹個小區,對接種環進行火焰滅菌,冷卻後,改變平板的角度,從第壹個小區向外畫壹個小區,再用同樣的方法畫平板,註意只能在初始位置越過前壹個小區。

(2)瓊脂斜面接種法:此法多用於菌種的保存,也可用於細菌的分離。左手拿斜面培養基,右手拿接種環。火焰滅菌冷卻後,挑出所需菌落,用右手小指捏住棉塞或膠塞,輕輕轉動後取出,註意不要汙染,立即用火焰對噴嘴和塞子進行滅菌,將接種環放入試管中,從斜面底部向噴嘴畫壹條曲線,然後用火焰對噴嘴和塞子進行滅菌並蓋緊,進行培養。

(3)穿刺接種法:此法適用於半固體、固體培養基和微量發酵管的接種,用於細菌的生化和動力學實驗。沿培養管中心穿刺至距管底0.5厘米左右,再沿穿刺線退出接種針。

(4)液體培養基接種法:方法與斜面接種法基本相同。接種環在培養管壁液面下摩擦,然後在液體中振動數次,塞緊塞子。註意塞子和噴嘴的滅菌操作。

3.細菌培養方法

根據細菌的生長特性、培養目的和要求,細菌的培養方法是不同的。主要分為以下幾類:

(1)有氧培養法:壹般培養法。細菌接種到培養基後,在37℃的培養箱中培養。適用於需氧菌和兼性厭氧菌的分離培養。

(2)二氧化碳培養法:某些細菌能在壹定的二氧化碳環境中生長良好。

①蠟燭罐法:將接種後的培養基放入幹燥器中,點燃蠟燭,密封,與容器壹起放入培養箱中培養。

(2)化學法:按每升容器中0.4 g碳酸氫鈉和3.5 ml鹽酸的比例,裝入兩個小容器中,放入幹燥器中,密封後接觸產生二氧化碳。

③二氧化碳培養箱法:培養基在專用的二氧化碳培養箱中培養,可根據需要調節二氧化碳的濃度。

(3)厭氧培養法:

①通風法:將培養基放入幹燥器中,將幹燥器抽真空,然後充入氮氣、氫氣和二氧化碳的混合氣體,置於培養箱中培養。

②焦性沒食子酸法:焦性沒食子酸在堿性溶液中形成焦性沒食子酸鹽,能吸收空氣中的氧氣,從而創造厭氧環境,適合厭氧菌的生長。培養方法:去掉培養皿的蓋子,翻過來,放上焦性沒食子酸1g,然後蓋上壹層脫脂棉,在脫脂棉上滴上1ml的IO%氫氧化鈉,然後蓋上翻過來的蓋子,迅速用蠟封好,放入37℃培養箱中2-4天,觀察結果。如果接種的培養基是試管,取壹個大試管,底部放2g焦性沒食子酸,加入10以上的玻璃珠,將培養基試管放在玻璃珠上,然後沿試管壁滴加2ml 10%氫氧化鈉溶液,用橡皮塞塞住試管口,放入37℃培養箱中培養。

③在肉湯中接種厭氧肝切片:由於肝切片或肉渣中含有谷胱甘肽,可發生氧化反應,從而降低環境中的氧化勢能,有利於厭氧菌的分離。接種方法是用接種環鉤取病料,接種到培養基中,在37℃培養箱中培養2-4天,觀察結果。

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