操作最簡單，對試劑條件要求低。缺點是純度不夠高，可能含有RNA、蛋白質等雜質。然而，用於壹般檢測目的的PCR反應模板就足夠了。
二、CTAB/NaCl法
CTAB/NaCl法提取的DNA純度高，蛋白質雜質少，保存時間長。編輯更傾向於在第五步孵育中加入終濃度為20μ g/ml的RnaseA，這樣最後就沒有RNASEA汙染了。每壹步都經過精心操作，獲得的DNA可以用於Southern印跡。
註意:DNA可以在-20℃長期保存，但要盡量減少反復凍融，否則會影響DNA的質量。
第三，鹽析法
在第壹種方法和第二種方法之間，CTAB提取糖有效，但也有毒，所以這種方法放棄了CTAB。
實驗註意:提取基因組時最好把槍頭切掉(切掉後在酒精燈上快速通過，使其斷口平滑)。為了避免槍頭對基因組的損傷，最好在引流的時候風幹。
擴展數據:
DNA提取方法
1.酚提取法:先用卵酶K和SDS破碎細胞，消化蛋白質，再用酚和酚氯提取，高速離心後取上清液，得到的DNA大小為100-150kb。
2.甲酰胺解聚法:如上破碎細胞，然後用高濃度甲酰胺解聚蛋白質與DNA的結合體，再透析獲得DNA，可獲得200 KB左右的DNA。
3.玻璃棒纏繞法:用鹽酸胍裂解細胞，裂解液塗於乙醇上，然後用鉤狀或U形玻璃棒在界面處輕輕攪拌，DNA沈澱溶液纏繞在玻璃棒上。產生的DNA約為80kb。
四。異丙醇沈澱法:基本與1法相同，只需用兩倍體積的異丙醇代替乙醇即可去除小分子RNA(溶於異丙醇)。
5.表面活性劑的快速制備方法:用Triton X-100A或NP40表面活性劑破碎細胞，然後用蛋白酶K或苯酚去除蛋白質，用乙醇沈澱或透析。
6.加熱法快速制備:96℃-100℃加熱五分鐘，然後離心，取上清液，可用於PCR反應。
7.堿變性快速制備:先用NaOH 20分鐘，再加入HCI中和，離心後取上清液，含少量DNA。
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