壹、批量提取法
稱取DEAE-纖維素(DE32或DE52)50g，置於1000ml燒杯中，先以蒸餾水漂浮除去細顆粒，再經酸堿處理後，用0.01～0.05mol/L，pH8.0左右的磷酸鹽緩沖液(PB)平衡。將水分抽幹，或用布氏濾鬥(內放兩層濾紙)過濾，收集濕纖維素，以降低其離子強度。按1ml血清加濕重5g DEAE纖維素，經過充分攪拌，置4℃吸附1h。上清液可再如此處理壹次，即獲得較純的IgG。該法提取IgG簡便，既可小量提取，也可大量制備。
二、Tris-Cl離子交換層析法(Ion-exchange chromatography)
材料和試劑
1. DE32或DE52纖維素。
2. HCl；NaOH；0.01～0.05mol/L，pH8.0 PB；0.01mol/L，pH8.6 Tris-Cl；0.5mol/L NaCl。
3. 待純化標本：雜交瘤腹水或培養上清，免疫血清或飽和硫酸銨粗提品。
4. 1.5×50cm 層析柱；透析袋；紫外分光光度計及其他透析和層析所需的試劑和器材。
操作步驟
1.DE52纖維素的處理：DE52經酸、堿處理，0.01mol/L，pH8.6 Tris-Cl平衡。
2. 裝柱：將層析柱固定於滴定架上，柱底墊壹圓形尼龍紗，出口接壹細塑料管並關閉出水。將浸泡於0.01mol/L，pH8.6 Tris-Cl中的DE52沿玻璃棒倒入柱中，待DE52自然沈降3～5cm高時，吸除0.01mol/L，pH8.6 Tris-Cl，或松開出水口螺旋夾，控制流速1～2ml/min，同時連續加入DE52至所需高度。待DE52完全沈降後，柱面放壹圓形濾紙片。
3. 平衡：松開出水口螺旋夾，以0.01mol/L，pH8.6 Tris-Cl平衡，控制流速為15滴/min，待流出液與洗脫液之pH值達到壹致時，停止平衡。
4. 待提取樣品的準備：將蛋白裝入透析袋裏，置4℃冰箱，對0.01mol/L pH8.6 Tris-Cl透析過夜。
5. 加樣、洗脫與收集：用吸管吸去柱面液體，以毛細吸管沿柱壁加入樣品，樣品體積相當於柱床體積的1％～2％，蛋白濃度為50～70mg。啟開出水口螺旋夾使樣品緩慢進入柱床內，並用少量洗脫液清洗柱壁；待液體進入柱床後，以0.01mol/L，pH8.6 Tris-Cl洗脫，控制流速為14～16滴/min。分部收集器收集，紫外監測，或人工收集，以紫外分光光度計分別測定每管280nm OD值，描繪洗脫液峰。
6. 濃縮：將洗脫液的280nm OD上峰段與下峰段各管分別合並，裝入透析袋，以PEG濃縮至所需體積。
三、Tris-PO4 離子交換層析法
該法在上述方法的基礎上稍加改良，即通過梯度洗脫，可用於血清中IgG和IgM的提取。
材料和試劑
1. DE32或DE52纖維素。
2. 待純化標本：雜交瘤腹水或培養上清，免疫血清或飽和硫酸銨粗提品。
3. 1.5×50cm 層析柱；透析袋及其他透析和層析所需的試劑和器材。
4. 梯度洗脫液包括：0.005 mol/L，pH8.6 Tris-PO4 ；0.055mol/L，pH6.0 Tris-PO4 ；0.5mol/L，pH5.1 Tris-PO4 。
操作步驟
1. 蛋白標本對0.005mol/L，pH8.6 Tris-PO4 透析。
2. DE52裝柱，並以0.005mol/L，pH8.6 Tris-PO4 平衡。
3. 加樣，以0.005mol/L，pH8.6 Tris-PO4 洗脫，紫外監測直至洗脫液280nm OD回到基線。這壹步驟可除去血清中其他蛋白。
4. 以350ml 0.055mol/L，pH6.0 Tris-PO4 洗脫，這壹步驟可用於純化血清IgG和IgM。
5. 以125ml 0.055mol/L，pH6.0 Tris-PO4 和125ml 0.5mol/L，pH5.1 Tris-PO4 梯度洗脫，總量收集250ml；重復步驟（5）。
6. 根據280nm峰值合並蛋白峰，透析濃縮和保存同上。
用過的DE52可用0.01mol/L，pH8.6 Tris-Cl和0.5mol/L NaCl、0.01mol/L，pH8.6 Tris-Cl梯度洗脫回收。再用蒸餾水洗至中性，加入0.02％疊氮鈉於4℃保存備用。